перекись водорода мифы и реальность перекись водорода мифы и реальность

Перекись водорода мифы и реальность перекись водорода мифы и реальность

В частности, гипоксия головного мозга может возникнуть при вентиляции легких в случае низкой концентрации кислорода в дыхательном газе, при обструкции и отеке легких, при бронхоэктатической болезни, при закрытом пневмотораксе, при остановке сердца, при геморрагическом шоке, при внутриутробной гипоксии плода и при асфиксии новорожденного [5,13,15]. Кроме этого, до сих пор не разработана технология внутриматочной вентиляции легких у плода и подводной оксигенации крови у утопленника [4,14].

К счастью, в последние годы стала активно изучаться возможность замены газа кислорода на водный раствор перекиси водорода, который позволяет оксигенировать кровь и другие жидкости путем инъекционной инфильтрации [7,12]. При этом инъекция раствора перекиси водорода в венозную кровь превращает ее в артериальную кровь без участия легких и без аэрации крови дыхательным газом, поскольку кровь содержит фермент каталазу, а каталаза расщепляет перекись водорода на воду и молекулярный кислород [11]. В результате каталазной реакции повышается концентрация кислорода в плазме, а в эритроцитах образуется оксигемоглобин. При этом венозная кровь тут же теряет темно-вишневый цвет и приобретает ярко-красный цвет [12].

Показано, что раствор перекиси водорода может стать конкурентом газа кислорода и артериальной крови при реанимации людей в критических состояниях, поскольку простая инъекция этого раствора способна повысить концентрацию кислорода практически моментально в любой части нашего тела независимо от работы сердца и движения артериальной крови по кровеносным сосудам [11]. Именно поэтому для прямой оксигенации коры головного мозга в 2014 году было предложено производить инъекцию раствора перекиси водорода непосредственно в кору головного мозга [11]. Поскольку технология обеспечения клеток коры головного мозга кислородом путем интракраниальной инъекции пока не получила законного разрешения, предполагается, что содержание кислорода в головном мозге можно повысить путем введения раствора перекиси водорода в желудок.

Цель исследования – изучить влияние раствора перекиси водорода на устойчивость организма к гипоксии при введении препарата в желудок.

Материалы и методы исследования

Влияние внутрижелудочного введения раствора перекиси водорода на устойчивость организма к гипоксии было исследовано в острых экспериментах с аквариумными рыбками по описанной ранее методике [7,9,10]. Исследования были проведены на 10 взрослых живых рыбках породы гуппи обоего пола массой по 300-320 мг, на 10 взрослых живых рыбках породы голубые неоны обоего пола массой по 290 – 310 мг, на 10 взрослых живых рыбках породы раcборы трехлинейные обоего пола массой по 1200 – 1300 мг и на 10 взрослых живых рыбках породы меченосцы женского пола массой по 6200 – 6400 мг. Моделирование острой гипоксии достигалось помещением каждой рыбки в пресную воду при температуре +25 – +26°С внутри отдельной пластиковой прозрачной герметичной емкости. Рыбки породы голубые неоны и гуппи помещались в воду объемом 5 мл, рыбки породы расборы трехлинейные – в воду объемом 10 мл, рыбки породы меченосцы помещались в емкость с водой объемом 20 мл. Исследования были проведены при давлении атмосферного воздуха в пределах 755 – 765 мм ртутного столба. В роли емкости были использованы пластиковые одноразовые инъекционные шприцы. В процессе гипоксии регистрировалась динамика двигательной активности рыб, в частности частота дыхательных движений жаберных дуг, частота открывания рта, частота и амплитуда колебаний плавников, а также последовательность изменения их цвета вплоть до полного окончательного обездвиживания рыбок и их смерти [7,10].

Было проведено 2 серии экспериментов с рыбками. В первой серии экспериментов перед началом опыта рыбкам производилась внутрибрюшинная инъекция 0,1 мл стерильного раствора 0,9 % натрия хлорида для инъекций или 0,1 мл стерильного раствора 0,9 % натрия хлорида и 0,1 % перекиси водорода. Во второй серии экспериментов в желудок рыбки вводилась в объеме 0,05 мл или 0,1 мл пресная вода (контроль) или пресная вода, включающая 0,05 % перекиси водорода (опыт). Введение жидкости в желудок рыб осуществлялось с помощью соответствующего желудочного мини-зонда, свободный конец которого был надет на инъекционную иглу, соединенную с инсулиновым шприцем, заполненным исследуемой жидкостью.

Антигипоксическое действие раствора перекиси водорода проверено на людях с помощью функциональной пробы Штанге. Для этого было определено значение пробы Штанге у 5 взрослых здоровых мужчин добровольцев в возрасте 21 – 14 года через 1 минуту после приема ими внутрь на голодный желудок 100 мл питьевой воды или 100 мл питьевой воды с 0,3 % перекиси водорода с газом кислородом при избыточном давлении 0,2 атм (при +8ºС). Принимаемые внутрь жидкости имели температуру +25°С.

Статистическая обработка результатов проведена с помощью программы BIOSTAT по общепринятой методике.

Результаты исследования и их обсуждение

Полученные результаты показали, что аквариумные рыбки всех исследованных нами пород в контрольной и в опытной сериях экспериментов не выдерживали длительное нахождение в ограниченном объеме воды внутри герметичной емкости и неминуемо погибали. В процессе выживания рыбок в условиях углубляющейся гипоксии происходили последовательные изменения их двигательной активности, которые под действием перекиси водорода изменялись следующим образом: в умеренных дозах перекись водорода продляла, а в чрезмерно высоких дозах укорачивала жизнь рыбок в герметичной емкости.

При этом были установлены следующие закономерности. Независимо от введения перекиси водорода рыбам сразу после герметизации емкости двигательная активность рыбок не отличалась от нормы. Длительность этого периода двигательной активности рыбок определялась величиной объема воды, что, по-видимому, определялось запасом в ней кислорода, поскольку увеличение объема воды увеличивало продолжительность, а уменьшение объема воды уменьшало продолжительность их жизни в герметичной емкости. Затем в момент снижения концентрации кислорода в воде до критически низкого значения рыбки полностью прекращали свою двигательную активность и становились практически неподвижными. Показано, что длительность периода неподвижного состояния рыбок определяется резервами их адаптации к гипоксии. После исчерпания резервов адаптации к гипоксии рыбки внезапно открывали рот во всю его ширину, одновременно с этим увеличивали и учащали вентиляционные движения ротовой полости и жаберных дуг, усиливали пропускание воды через открытый рот и жабры, а также колебательные движения боковых плавников, хвоста и всего тела. Одновременно с этим рыбки начинали судорожно метаться по емкости, как бы пытаясь найти выход из нее, и периодически испражнялись.

Период судорожных подергиваний рыб длится около минуты, после чего рыбы окончательно становятся неподвижными, но продолжают пропускать воду через полуоткрытый рот и жабры. В таком состоянии рыбы опускаются на дно емкости, где тело у половины рыбок остается спиной вверх, а у другой половины – вверх животом. Через несколько секунд рыбки всплывают вверх, остаются в неподвижном состоянии, но сохраняют полость рта широко открытой, а их жабры продолжают медленно прогонять воду через рот еще около 1 минуты. После этого рыбки замирают окончательно.

Влияние перекиси водорода на продолжительность жизни рыбок в условиях гипоксии было изучено на рыбках породы меченосцы и расборы трехлинейные. Первоначально влияние внутрибрюшинной инъекции 0,1 мл раствора 0,9 % натрия хлорида и 0,1 % перекиси водорода было изучено на рыбках породы расборы трехлинейные. Результаты опытов показали, что внутрибрюшинная инъекция перекиси водорода в указанной дозе ускоряет наступление смерти рыбок на 7,44 ± 0,62 минут (Р ≤ 0,05, n = 5) по сравнению с контролем, то есть на 20 %.

Вслед за этим было сделано предположение о том, что в случае введения в желудок рыб раствора перекиси водорода, всасывание кислорода не будет столь интенсивным, поэтому рыбки вряд ли будут отравлены кислородом. Кроме этого, для уменьшения всасывания кислорода из желудка решено было ввести в него раствор перекиси водорода с меньшей концентрацией, а именно – с концентрацией 0,01 и 0,05 %. При этом исходя из разницы размеров меченосцев и расборов трехлинейных с целью внутрижелудочной оксигенации в желудок рыбок породы расборы трехлинейные было введено по 0,05 мл, а в желудок рыбок породы меченосцы – по 0,1 мл раствора 0,05 % перекиси водорода.

Результаты опытов показали, что после введения раствора 0,01 % перекиси водорода в желудок меченосцев и расборов трехлинейных динамика двигательной активности рыб осталась прежней. Однако введение раствора 0,05 % перекиси водорода улучшило показатели динамики двигательной активности и выживаемости рыбок в герметичной емкости с водой (таблица).

Как следует из данных, приведенных в таблице, введение в желудок меченосцев и расборов трехлинейных раствора 0,05 % перекиси водорода удлиняет продолжительность жизни рыб в герметичной емкости с водой почти на 20 %.

Хронология динамики периодов двигательной активности меченосцев в 20 мл и расборов трехлинейных в 10 мл пресной воды при +25°С с указанием времени в минутах с начала гипоксии при наличии в желудке рыб пресной воды (контроль) или пресной воды с 0,05 % перекиси водорода (опыт). При этом рыбкам породы расборы трехлиненые жидкость вводилась в желудок в объеме 0,05 мл, а меченосцам – в объеме 0,1 мл

Начало периода неподвижного состояния

Внезапное появление единичных дыхательных движений жабрами

Внезапное появление неожиданных активных дыхательных движений ртом и жабрами

Полное и окончательное неподвижное состояние и смерть

Источник

Перекись водорода мифы и реальность перекись водорода мифы и реальность

Кровоподтеки кожи давно являются привычными исходами травм и некоторых медицинских процедур [6, 8, 9, 14]. Несмотря на то, что кожа в местах кровоподтеков и синяков воспаляется, теряет нормальную структуру и функцию, официальная медицина до сих пор не признает эту патологию самостоятельным заболеванием [11]. Поэтому отсутствует стандарт его лечения и не разработаны специальные отбеливающие лекарственные средства [12].

Однако в 2013 году ситуация кардинально изменилась, поскольку впервые было предложено выделить кровоподтеки кожи пациентов в местах инъекций в самостоятельное заболевание, которое получило название «Инъекционная болезнь кожи» [9, 11]. При этом специальные средства профилактики и лечения кровоподтеков до сих пор отсутствуют.

Тем не менее, в последние годы достигнуты значительные успехи в разработке чистящих, моющих и отбеливающих средств, которые находят широкое применение в быту в борьбе с загрязнениями унитазов, ванн, раковин и медицинских халатов различными биологическими тканями, включая пятна крови. Но данные гигиенические средства не пригодны для инъекций и аппликаций с целью отбеливания кожи в местах кровоподтеков, поскольку имеют чрезмерно высокую физико-химическую агрессивность, поскольку они способны вызвать газовую эмболию, некроз тканей и острое отравление, характерное для поверхностно активных веществ (ПАВ). Тем не менее, их состав может быть учтен для создания новой фармакологической группы лекарств – отбеливателей кровоподтеков. Дело в том, что аналогичный научный подход (обеспечение фармакологической активности за счет определенных физико-химических свойств растворов лекарственных средств) был успешно использован нами ранее при разработке новой фармакологической группы лекарств – пиолитических средств, которые способны эффективно разжижать не только густой гной, но и сгустки крови [1, 2, 3, 4, 5, 7, 13].

Цель исследования – разработать отбеливатель кровоподтеков кожи и подкожно-жировой клетчатки.

Материалы и методы исследования

Проведены лабораторные исследования с использованием стандартных ватно-марлевых тампонов и консервированной донорской крови. В опытах использовалась просроченная на 5 дней консервированная донорская кровь, которая перед опытами дополнительно разводилась водой для инъекций с целью гемолиза. Для этого за 10 минут до применения определенная порция крови разводилась дистиллированной водой в соотношении 1/5 при температуре + 25 °С. Сухие ватно-марлевые тампоны опускались на сухое дно чашек Петри так, чтобы плоскость тампонов располагалась горизонтально, после этого в центр каждого тампона вводилось по 3 капли гемолизированной крови. Затем тампоны инкубировались 10 минут при температуре + 25 °С.

После этого кровавые тампоны пропитывались исследуемыми растворами при температуре + 25 °С с помощью медицинского шприца, соединенного с инъекционной иглой, предназначенной для подкожных инъекций. Исследуемые растворы вводились в объеме 20 мл в центр каждого кровавого пятна в течение 60 секунд. Динамика изменения цвета тампонов регистрировалась с помощью цветной киносъемки, после чего полученные результаты воспроизводились на экране компьютера и анализировались с помощью специальной программы. При этом исследовалось газообразование, определялась площадь зоны полного обесцвечивания тампона и длительность времени, необходимого для обесцвечивания тампона.

Статистическая обработка результатов проведена с помощью программы BIOSTAT по общепринятой методике.

Результаты исследования
и их обсуждение

В качестве прототипов и аналогов нового фармакологического средства нами были использованы распространенные бытовые отбеливатели и средство, указанное в «Способе экспресс удаления пятен крови с одежды» [2]. Проведенный нами анализ состава указанных средств показал, что фармакологическое средство, претендующее на роль нового медицинского отбеливателя, вероятнее всего, должно включать следующие ингредиенты:

– натрия гидрокарбонат (то есть «съедобную» щелочь, а именно – питьевую соду);

– динатриевую соль ЭДТУ (то есть клещевидное соединение, комплексон);

– перекись водорода (химический аккумулятор кислорода).

При этом натрия гидрокарбонат – это самый безопасный естественный щелочной буфер, который обеспечивает щелочность плазмы крови. Натриевая соль ЭДТА (этилендиаминтетраацетат натрия) – это безопасный комплексон, который обеспечивает инактивацию ионов железа, освобождающихся после гемолиза эритроцитов и азрушения гемоглобина за счет его клещевидного «связывания». Перекись водорода – это самая безопасная неорганическая кислота, способная выделять молекулярный кислород под действием каталазы крови.

Перед проведением лабораторных исследований нами были проведены теоретические расчеты, направленные на обоснование состава и концентрации ингредиентов разрабатываемого отбеливателя. Анализ литературных данных показал, что разрабатываемый отбеливатель должен содержать натрия гидрокарбонат в концентрации 1,8 % и динатриевую соль ЭДТУ – в концентрации 0,25 %, поскольку именно такое их содержание обеспечивает осмотическую активность в пределах 285–295 мОсмоль/л воды, щелочность в пределах рН 8,4, а также умеренную буферную и комплексообразующую активность раствора при отсутствии токсичности и местного раздражающего действия.

Более трудной задачей оказалось выяснение требуемой концентрации перекиси водорода. Опираясь на наш прежний опыт разработки лекарственных средств, включающих перекись водорода, мы исходили из того, что концентрация перекиси водорода, обеспечивающая обесцвечивание крови без выделения газа, находится в диапазоне ниже 0,05 %. В связи с этим нами были проведены лабораторные исследования, направленные на конкретизацию искомого диапазона концентраций перекиси водорода. Для этого все испытуемые растворы содержали перекись водорода в диапазоне от 0,05 до 0,008 %.

Проведено 9 серий опытов с растворами, включающими 1,8 % натрия гидрокарбоната и 0,25 % динатриевой соли этилендиаминтетрауксусной кислоты, которые дополнительно содержали перекись водорода в концентрации (соответственно) 0,05 %, 0,04 %, 0,035 %, 0,03 %, 0,02 %, 0,015 %, 0,01 %, 0,0095 %, 0,009 или 0,008 %.

Растворы вводились в кровавые ватно-марлевые тампоны по единой схеме. При этом было установлено следующее.

В первой серии опытов центры кровавых пятен в тампонах красного цвета после введения в них раствора (содержащего 0,05 % Н2О2) начинали моментально светлеть с образованием пузырьков газа и пены. Образовавшиеся пузыри сохранялись в кровавой пене 10,3 ± 0,3 минут (Р ≤ 0,05, n = 5). При этом центр кровавого пятна практически полностью обесцвечивался, а площадь обесцвеченного участка составляла 64 ± 2,5 мм2 (Р ≤ 0,05, n = 5). Периферическая зона пятна крови при этом приобретала светло-желтый цвет.

Во второй серии опытов центры кровавых пятен в тампонах красного цвета после введения в них раствора (содержащего 0,04 % Н2О2) начинали светлеть моментально с образованием пузырьков газа и пены. Образовавшиеся пузыри сохранялись в кровавой пене 7 ± 0,1 минут (Р ≤ 0,05, n = 5), после чего образование пузырьков газа прекращалось. Центр кровавых пятен практически полностью был обесцвечен, а площадь обесцвеченного участка составляла в среднем 49 ± 2,0 мм2 (Р ≤ 0,05, n = 5). Периферическая зона пятна крови приобретала светло-желтый цвет.

В третьей серии опытов центры кровавых пятен в тампонах красного цвета после введения в него раствора (содержащего 0,035 % Н2О2) начинали моментально светлеть со слабым образованием пузырьков газа без пены. Образовавшиеся пузыри лопались и через 1,5 ± 0,08 минут (Р ≤ 0,05, n = 5) образование пузырьков газа прекращалось. При этом центры кровавых пятен оказывались бесцветными, а их площадь составляла в среднем 36 ± 0,9 мм2 (Р ≤ 0,05, n = 5). Периферическая зона пятен крови приобретала желтый цвет.

В четвертой серии опытов центр кровавых пятен в тампонах после введения в него раствора (содержащего 0,03 % Н2О2) начинал светлеть без образования пузырьков газа и пены практически моментально. Через 2 ± 0,1 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) центр кровавого пятна во всех тампонах был лишен красной окраски и оказался почти бесцветным (площадь его составила 29 ± 0,6 мм2 (Р ≤ 0,05, n = 5). Периферическая зона пятна крови приобретала желто-желто-оранжевый цвет.

В пятой серии опытов центры кровавых пятен в тампонах начинали быстро светлеть после введения испытуемого раствора (содержащего 0,02 % Н2О2) без образования пузырьков газа и пены. Уже через 4 ± 0,15 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) центр кровавых пятен был лишен красной окраски, стал бесцветным, а площадь его составила в среднем 19 ± 0,7 мм2 (Р ≤ 0,05, n = 5). Периферическая зона пятна крови в тампонах приобретала оранжево-желтый цвет.

В шестой серии опытов центры кровавых пятен в тампонах начинали светлеть после введения испытуемого раствора (содержащего 0,01 % Н2О2) без образования пузырьков газа и пены. Через 5 ± 0,19 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) центр кровавых пятен терял красный цвет и становился бесцветным, а площадь его составляла в среднем 14 ± 0,6 мм2 (Р ≤ 0,05, n = 5). Периферическая зона пятна крови приобретала оранжево-желтый цвет.

В седьмой серии опытов центры кровавых пятен в тампонах начинали светлеть после введения испытуемого раствора (содержащего 0,0095 % Н2О2) без образования пузырьков газа и пены. Через 6 ± 0,17 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) центр кровавых пятен терял красный цвет и становился бесцветным, а площадь его составляла 11 ± 0,5 мм2 (Р ≤ 0,05, n = 5). Периферическая зона пятна крови приобретала оранжевый цвет.

В восьмой серии опытов центры кровавых пятен в тампонах начинали светлеть после введения испытуемого раствора (содержащего 0,009 % Н2О2) без образования пузырьков газа и пены. Через 10 ± 0,3 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) центр кровавых пятен терял красный цвет и становился бесцветным, а площадь его составляла в среднем 9 ± 0,35 мм2 (Р ≤ 0,05, n = 5). Периферическая зона пятна крови приобретала красно-оранжевый цвет.

В девятой серии опытов центры кровавых пятен (имевшие красный цвет) после введения в них раствора (содержащего 0,008 % Н2О2) начинали светлеть без образования пузырьков газа и пены. Через 15 ± 0,8 секунд (Р ≤ 0,05, n = 5) они теряли цвет и становились бесцветными, а их площадь составляла в среднем 6 ± 0,15 мм2 (Р ≤ 0,05, n = 5). Периферическая зона пятна крови приобретала красно-оранжевый цвет.

Следовательно, водные растворы 1,8 % натрия гидрокарбоната и 0,25 % динатриевой соли этилендиаминтетрауксусной кислоты при внесении к ним перекиси водорода в диапазоне концентраций 0,05–0,03 % обесцвечивают кровавые тампоны, но с бурным и длительным образованием газа. Поэтому они не годятся для подкожных и внутрикожных инъекций.

Водные растворы 1,8 % натрия гидрокарбоната, 0,25 % динатриевой соли этилендиаминтетрауксусной кислоты и 0,03–0,01 % перекиси водорода эффективно и быстро обесцвечивают кровавые тампоны без образования газа. Следовательно, растворы именно такого состава более всего пригодны для обесцвечивания кровоподтеков. Они обеспечивают полное обесцвечивание окровавленных тампонов за 10–15 секунд без образования пузырьков газа и пены. Данное средство получило название «Отбеливатель кровоподтеков» (решение ФИПС от 28 октября 2014 года о выдаче патента на изобретение по заявке № 2014101094).

Изобретенный нами отбеливатель кровоподтеков состоит из следующих компонентов (в ас. %):

Натрия гидрокарбонат 1,8

Этилендиаминтетраацетат натрия 0,25

Перекись водорода 0,03–0,01

Вода для инъекций Остальное

Вслед за этим нами были проведены первичные испытания отбеливающего средства при внутрикожных инъекциях в области трупных пятен у 2-х трупов. Результаты проведенных исследований подтвердили высокую отбеливающую активность изобретенного «Отбеливателя кровоподтеков» при инъекциях в места трупных пятен без образования газа в тканях.

По нашему мнению поставленная цель достигается за счет следующих физико-химических факторов:

1. За счет водного изотонического раствора, обеспечивающего разбавление (разведение) межклеточной коллоидной жидкости с «красителем» и удаление его с собой при последующем всасывании в кровь;

2. За счет ощелачивающего окислителя, обеспечивающего размягчение, разрыхление межклеточной коллоидной среды и углубление в нее при одновременном ускорении процесса биотрансформации «красителя» без газовой эмболии и эмфиземы тканей;

3. За счет комплексообразователя, обеспечивающего конъюгацию и ускоряющего инактивацию органических и неорганических составных ингредиентов «красителя», а также растворимых и нерастворимых солей железа.

Водный раствор, состоящий из 1,8 % гидрокарбоната натрия, 0,25 % динатриевой соли этилендиамитетрауксусной кислоты и 0,03 – 0,01 % перекиси водорода представляет собой водный изотонический раствор с окислительной, комплексообразующей и щелочной активностью. Предложенный состав ингредиентов и соотношение их концентрации в водном растворе являются оптимальными для придания ему способности извлекать железо из его нерастворимых солей, замещать его при этом на растворимые соли натрия и образовывать хелатные (клещевидные) соединения с железом растворимых и нерастворимых солей железа без образования пузырьков газа и без оказания денатурирующего действия на клетки кожи и подкожно-жировой клетчатки, а также без общего токсического действия на человека, то есть без его отравления.

При этом катионы натрия и предложенное их суммарное количество в растворе обеспечивают условия биофизического (электрофизиологического) покоя для клеток, поскольку концентрация внеклеточных катионов натрия соответствует концентрации, сопровождающей электрофизиологический «потенциал покоя» в мембранах клеток нашего организма.

Гидрокарбонат натрия в предложенной концентрации создает собой аналог физиологического «гидрокарбонатного» буфера, являющегося основным буфером плазмы крови и внеклеточной жидкости человека, придает раствору стабильную щелочную активность в пределах рН 8,4, способность разжижать жир, кровь, межклеточную жидкость, лимфу, а также улучшает диффузию водного раствора в коже и в подкожно-жировой клетчатке, ускоряет рассасывание постинъекционного инфильтрата, появляющегося в тканях при внутрикожной и/или подкожной инъекции. При этом щелочной раствор не вызывает щелочной ожог тканей.

Динатриевая соль этилендиаминтетрауксусной кислоты в предложенной концентрации придает раствору способность связывать 2-х валентные катионы железа из раствора, а также извлекать железо из нерастворимых солей и связывать их за счет комплексообразования с ЭДТУ. Последующее удаление связанного железа из области кровоподтека с рассасывающимся раствором отбеливателя кровоподтеков уменьшает интенсивность окраски области кровоподтека.

Перекись водорода в предложенной концентрации придает раствору достаточную окислительную активность, но исключает образование пузырьков газа кислорода при инъекции раствора в кожу и/или в подкожно-жировую клетчатку в области кровоподтека, то есть исключает холодное кипение в тканях при инъекции в них.

Разработанный нами «Отбеливатель кровоподтеков» может быть введен в кожу и в подкожно-жировую клетчатку с помощью инъекций. Инъекционное введение средства в окрашенную зону кожи и/или подкожно-жировой клетчатки обеспечивает уменьшение интенсивности ее цвета за счет ускоренного окислительного разрушения восстановленного гемоглобина, метгемоглобина, вердохромогена, биливердинибилирубина и других «цветных» органических и неорганических соединений («красителей»). Необходимая окислительная трансформация цветных соединений обеспечивается выделением молекулярного кислорода из перекиси водорода на границе сред под действием каталазы крови в условиях оптимальной щелочной и осмотической активности. Кроме этого, раствор уменьшает интенсивность окраски тканей за счет своей разводящей, проникающей (за счет омыляющей активности) и промывающей активности, обеспеченных его изотонической и оптимальной щелочной активностью. Промывающая и проникающая активность раствора улучшает диффузию раствора в тканях в области кровоподтека и последующее всасывание раствора в общее кровеносное русло вместе с «красителями» из области инфильтрата, образованного инъекцией, за счет ускоренного рассасывания постинъекционного инфильтрата.

Источник